I ricercatori spesso studiano biomolecole come proteine o amminoacidi collegando chimicamente un "fluoroforo", una molecola sensibile che assorbe e riemette energia dalla luce.
Quando attivati da un laser e fotografati attraverso un microscopio ad alta potenza, questi tag o etichette fluoroforali esplodono in un arcobaleno di colori e informazioni. Forniscono una vasta gamma di informazioni che possono, ad esempio, aiutare a rilevare malattie o identificare condizioni genetiche.
Per rilevare più di un tipo di molecola alla volta, o misurazioni "multiplex", vengono utilizzati ulteriori tipi di fluorofori che emettono diversi colori di luce. Ma è sorprendentemente difficile distinguere i diversi colori a livello di singola molecola. Questo è il motivo per cui la maggior parte dei microscopi osserva solo tre o quattro colori.
I ricercatori possono rompere questa barriera cromatica utilizzando tecniche avanzate che comportano cicli di etichettatura e imaging di giorni interi o impiegando configurazioni complicate con molti laser. Trovare un modo semplice e veloce per vedere molti colori, tuttavia, è rimasta una sfida importante.
I ricercatori della Pritzker School of Molecular Engineering dell'Università di Chicago hanno trovato una nuova soluzione a questa sfida, delineata in un articolo pubblicato oggi su Nature Nanotechnology . Una nuova tecnica delineata dallo Squires Lab utilizza tre semplici elementi chimici per progettare dozzine di tag "FRETfluor", creando uno spettro di colori più bello e sfumato che i ricercatori possono utilizzare per etichettare le biomolecole.
"Il nostro approccio è più semplice. Si tratta di un'operazione di etichettatura, di un'operazione di imaging", ha affermato il co-primo autore Jiachong Chu, Ph.D. in ingegneria molecolare Pritzker dell'Università di Chicago. candidato. "Ciò significa che puoi fare di più con meno. Attualmente, la nostra nuova tecnica è la migliore sul campo."
Un nuovo percorso verso il multiplexing
Le singole molecole sono piccole e i campioni cellulari sono relativamente enormi, complicati e disordinati. L'obiettivo finale di quest'area di ricerca, che il documento del team PME ha avvicinato più che mai, è il multiplexing.
"Multiplexare i campioni significa essere in grado, nella stessa misurazione, di misurare più di una specie di molecola, quindi forse si hanno 10 o 50 o centinaia di proteine diverse che si desidera identificare", ha affermato Allison, professore assistente di ingegneria molecolare della famiglia Neubauer. Scudieri. "Con questa nuova tecnica possiamo realizzarne decine. Credo che potremo estenderlo a centinaia."
Per affrontare questa sfida, il team di Squires Lab ha trovato un nuovo modo innovativo di utilizzare una tecnica consolidata:Förster Resonance Energy Transfer o FRET. FRET è un meccanismo che descrive come l'energia viene trasferita tra molecole sensibili alla luce. È un modo con cui i ricercatori possono misurare la distanza tra le diverse parti di una molecola o segnalare quando due molecole interagiscono. I segnali FRET sono eccezionalmente sensibili alle proprietà dei fluorofori partecipanti, che il team dell'UChicago ha utilizzato per mettere a punto le proprie etichette FRETfluor.
"Questo progetto utilizza FRET in un modo nuovo", ha affermato la co-prima autrice Ayesha Ejaz, Ph.D. candidato in Chimica. "FRET è comunemente utilizzato per misurare le distanze e osservare le dinamiche nelle biomolecole. Abbiamo modificato la spaziatura tra un colorante donatore e un accettore per creare diverse efficienze FRET e altre proprietà che utilizziamo per identificare i diversi costrutti."
I 27 tag utilizzati nella ricerca del team PME erano 27 "FRETfluors" progettati utilizzando una semplice combinazione di DNA, un colorante cianinico verde (Cy3) e un colorante cianinico rosso (Cy5). Oltre a brillare in diversi colori, i FRETfluor mostrano ciascuno altre proprietà sintonizzabili come i tempi di come vengono emessi i fotoni o quali sono gli orientamenti di questi fotoni.