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    I ricercatori catturano immagini ad alta risoluzione di ioni magnesio che interagiscono con l’enzima di modifica genetica CRISPR
    AceCas9 e la sua dipendenza dai metalli. a , In alto:organizzazione del dominio di AceCas9 mostrata come blocchi colorati nella direzione dal capolinea N al capolinea C. Le regioni corrispondenti ai domini strutturali sono colorate ed etichettate, e i relativi residui sono etichettati. RuvC-I–RuvC-III, segmenti discontinui del dominio RuvC; BH, elica del ponte; REC1, dominio di riconoscimento dell'acido nucleico 1; REC2, dominio di riconoscimento dell'acido nucleico 2; HNH, dominio nucleasi HNH; Dominio di interazione PID, PAM. In basso:diagramma schematico degli acidi nucleici utilizzati in questo studio, mostrati come nucleotidi nelle strutture secondarie previste. I siti di scissione per il DNA NTS da parte del dominio RuvC e il DNA TS da parte del dominio HNH sono indicati rispettivamente dai triangoli verdi e viola. Il PAM e la regione guida sono evidenziati in grigio. TS e NTS sono numerati in sequenza con numeri NTS indicati con asterischi. b , Sovrapposizione dei profili di filtrazione su gel della proteina AceCas9 e del suo complesso ribonucleoproteico (RNP) assemblati con lo sgRNA mostrato in a . I campioni raccolti per la biochimica e l'analisi crio-EM sono evidenziati dall'area ombreggiata in grigio. c , Risultati di scissione del DNA a doppio filamento (dsDNA) assemblato con il DNA TS marcato con esaclorofluoresceina (HEX) (rosso) o l'oligonucleotide NTS marcato con amiditi di fluoresceina (FAM) (verde) a 10 nM da AceCas9 o i suoi mutanti catalitici a 1 μM in presenza di vari ioni bivalenti a 10 mM. WT, AceCas9 di tipo selvaggio; U, substrato di DNA non scisso; C ha tagliato il substrato del DNA; dHNH, AceCas9 con HNH disattivato; dRuvC, AceCas9 con RuvC disattivato. Credito:Catalisi della natura (2023). DOI:10.1038/s41929-023-01031-1

    La tecnologia di modifica genetica nota come CRISPR ha portato a cambiamenti rivoluzionari nel campo dell'agricoltura, della ricerca sanitaria e altro ancora.



    Nella ricerca pubblicata su Nature Catalysis , gli scienziati della Florida State University hanno prodotto le prime immagini ad alta risoluzione e time-lapse che mostrano gli ioni magnesio che interagiscono con l'enzima CRISPR-Cas9 mentre taglia filamenti di DNA, fornendo prove chiare che il magnesio svolge un ruolo sia nella rottura dei legami chimici che nella quasi-distruzione. taglio simultaneo del DNA.

    "Se stai tagliando i geni, non vuoi che si rompa solo un filamento di DNA, perché la cellula può ripararlo facilmente senza modifiche. Vuoi che entrambi i filamenti siano rotti", ha detto Hong Li, professore del Dipartimento di Chimica. e Biochimica e direttore dell'Istituto di Biofisica Molecolare. "Sono necessari due tagli ravvicinati. Il magnesio gioca un ruolo in questo e abbiamo visto esattamente come funziona."

    CRISPR-Cas9 è lo strumento più utilizzato per la manipolazione genetica. La tecnologia utilizza un enzima riproposto per legarsi al DNA, consentendo alterazioni in posizioni specifiche del genoma.

    Gli scienziati sapevano che il magnesio gioca un ruolo in questo processo, ma non era chiaro esattamente come, e nessuno era stato in grado di catturare da vicino immagini in time-lapse del processo. Sfruttando una versione più lenta di CRISPR-Cas9, questa ricerca ha dimostrato che gli ioni magnesio al centro della reazione di catalisi detengono la chiave per il taglio quasi simultaneo.

    "Penso che molte volte nella scienza, anche se puoi dedurre qualcosa, ne vorresti la prova", ha detto Li. "Ad esempio, con il magnesio tutti sanno che ne hai bisogno, ma non vederlo in azione non è scienza completa, giusto? Non hai lo stesso livello di comprensione di come funziona."

    Un'immagine dell'enzima CRISPR-Cas9 incorporato nel ghiaccio che interagisce con gli ioni magnesio catturato dal microscopio crioelettronico presso il Biological Science Imaging Resource della FSU. L'immagine è sulla scala dei nanometri, che sono un miliardesimo di metro. Crediti:Hong Li/FSU College of Arts and Sciences

    I ricercatori hanno utilizzato il microscopio crioelettronico presso il Biological Science Imaging Resource della FSU, che può produrre immagini con una risoluzione quasi atomica, per osservare gli ioni metallici e altri atomi al lavoro all’interno dell’enzima CRISPR-Cas9. Ciò ha permesso loro di raccogliere dati che non solo hanno confermato le loro ipotesi precedenti, ma hanno anche portato alla sorprendente scoperta su come il magnesio coordina le rotture del doppio filamento.

    CRISPR ha fatto il suo debutto nell'editing genetico nel 2013 e da allora gli scienziati hanno lavorato per aumentarne l'affidabilità ed espanderne l'applicabilità a una varietà di organismi e tipi di cellule diversi.

    "Alterando i siti attivi - le serie di 'forbici' che tagliano i filamenti di DNA bersaglio e non bersaglio - possiamo influenzare la capacità di Cas9 di utilizzare metalli alternativi per il taglio", ha detto il dottorando e coautore dell'articolo Mitchell Roth. "C'è ancora molto da esplorare con CRISPR."

    Comprendere come ciascun elemento influisce sul funzionamento dell'enzima offre agli scienziati informazioni su quali strade di ricerca potrebbero produrre nuove conoscenze e usi. Li e il suo team stanno pianificando ulteriori ricerche per studiare come CRISPR-Cas9 possa essere riorganizzato per altri scopi.

    Coautori di questo articolo sono stati gli ex ricercatori post-dottorato Anuska Das e Jay Rai, il dottorando Yuerong Shu, la studentessa universitaria Megan L. Medina e l'ex studentessa universitaria Mackenzie R. Barakat, tutti della FSU.

    Ulteriori informazioni: Anuska Das et al, Stati catalitici accoppiati e ruolo della coordinazione dei metalli in Cas9, Nature Catalysis (2023). DOI:10.1038/s41929-023-01031-1

    Informazioni sul giornale: Catalisi della natura

    Fornito dalla Florida State University




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